Герпес кошек вызывает заболевание, которое называется ринотрахеитом. Это острая вирусная инфекция, основными признаками которой являются повышение температуры, поражение верхних дыхательных путей, проявляющееся насморком (ринитом), бронхитом, трахеитом, а иногда и сильным воспалением легких, также могут поражаться органы зрения. При нарушении в организме иммунного ответа вирус накапливается в клетках, и кошка становится носителем возбудителя, выделяя его в окружающую среду.

Причины развития герпесной вирусной инфекции у кошек

Ринотрахеит у кошек вызывается ДНК-содержащим кошачьим герпесвирусом - Feline viral rinotracheitis-2, который относится к семейству Herpesviridae. Вирус хорошо размножается в клетках слизистых оболочек носоглотки, миндалин, трахеи, конъюнктивы, которые являются отличной питательной средой для его роста и развития.

Устойчивость вируса к внешним факторам

Вирус хорошо сохраняется в кислой среде, но достаточно чувствителен к повышенным температурам. Отрицательное воздействие на него оказывают эфир, хлороформ, гидроокись натрия, формалин и фенол. Эти средства обычно применяются для дезинфекции помещения, они помогают освободить предметы внешней среды от вируса.

Восприимчивость кошек к ринотрахеиту (герпесу)

Заразиться герпесвирусом может кошка любого возраста, но чаще болеют котята. Для ринотрахеита характерно быстрое распространение при скученном содержании кошек, поэтому подчас в питомниках заболевание приобретает характер энзоотий. При заболевании хотя бы одного животного, есть большая вероятность, что вирус поразит и остальных кошек, содержащихся в одной группе.

Возникновению ринотрахеита способствуют стресс-факторы, к которым относятся:

• переохлаждение кошки;
• плохие условия содержания;
• неудовлетворительное кормление, связанное с недостатком в рационе питательных веществ, так необходимых для нормального развития организма и поддержания его в отличном состоянии.

Как происходит заражение герпесом у кошек?

Основной путь передачи вируса от одного животного к другому носит воздушно-капельный характер, то есть заражение происходит при непосредственном контакте. Алиментарный путь заражения, через корма, не доказан, но никто не утверждает, что он не возможен в принципе.

Как правило, после переболевания кошка еще долго остается вирусоносителем ринотрахеита и при благоприятных для вируса условиях, например, наличия каких-то стресс-факторов, болезнь может рецидировать. В редких случаях кошка полностью освобождается от вируса, но для этого она должна обладать отличным иммунитетом, которым может похвастаться далеко не каждое животное.

Признаки ринотрахеита (герпеса) кошек

После попадания вируса внутрь организма и по истечении инкубационного, или скрытого, периода болезни у кошки появляются следующие признаки, характерные для этой патологии:

• чиханье;
• внезапное появление кашля;
• серозные, с примесью гноя, истечения из глаз;
• насморк;
• кошку начинает лихорадить, а температура тела поднимается до отметки 41С;
• конъюнктива воспалена и отечна;
• глазная щель становится узкой, а веки слипаются в результате гнойных выделений;
• участки шерсти вокруг глаз, носа загрязнены выделениями.

Чем дольше длится заболевание, тем сильнее ухудшается состояние пушистого питомца. Ринотрахеит осложняется бактериальной микрофлорой, в результате чего развиваются сопутствующие заболевания: воспаление трахеи, бронхов и пневмония.

Герпес вирус у кошек может протекать, как остро, так и хронически. Острое течение ринотрахеита продолжается приблизительно неделю или две и у взрослых особей заканчивается полным выздоровлением. Смертность практически отсутствует.

Если же вирус герпеса внедрился в организм котенка или животного с очень слабым иммунитетом, то болезнь может закончиться летально. У этой же категории животных ринотрахеит в большинстве случаев осложняется тяжелой пневмонией.

Хроническое течение ринотрахеита продолжается до полутора месяцев и помимо всех признаков, описанных выше, характеризуется развитие язвенного кератита, панофтальмии, вплоть до слепоты.

Как поставить диагноз на герпес кошек?

Диагноз ставят на основании характерных клинических признаков. Для подтверждения диагноза необходимо взять анализ истечений, который отправляют в вирусную или серологическую ветеринарную лабораторию. Обнаружение телец-включений вируса служит основанием для постановки диагноза на ринотрахеит (герпесвирусную инфекцию).

Дифференциальный диагноз

Признаки ринотрахеита во многом схожи с признаками кальцивироза, лечение которых в некоторой степени похоже. Но все равно необходимо проводить дифференциацию этих двух заболеваний, чтобы быть во всеоружии и знать с чем бороться.

Вопрос осложняется тем, что в последнее время наблюдается сильная мутация этих двух вирусов и в некоторых случаях довольно сложно отличить их между собой. В ближайшем будущем из-за процессов мутации может появиться новое вирусное заболевание, которое принесет немало неприятных сюрпризов любителям кошек, и, возможно, будет представлять интерес для научной деятельности.

Как лечить герепес у кошек?

Лечение ринотрахеита у кошек во многом схоже с лечением кальцивироза.
В первую очередь пытаются защитить роговицу от вирусного повреждения и развития воспалительного процесса, перетекающего в панофтальмит. Для этого применяются мази, обладающие противовирусным эффектом (ацикловир), неплохие результаты дает закладывание под нижнее веко тетрациклиновой мази. Применять их надо 5-6 раз в сутки.

В качестве противовирусной терапии есть опыт применения ацикловира внутрь в виде таблеток. Но давать их надо строго под наблюдением лечащего врача и с его разрешения. Дело в том, что длительный прием этого лекарства вызывает у кошки нарушение функции печени. После отмены препарата в течение какого-то времени печень восстанавливается, но не стоит надеяться на авось и назначать ацикловир на основе собственного решения.

При герпесвирусной инфекции огромное внимание следует уделить кормлению и содержанию животного. Кошке обеспечивают покой в теплом помещении. Кормить иногда приходится насильно жидкими или полужидкими кормами.

Для подавления роста секундарной микрофлоры, дабы предотвратить развитие воспалительных процессов в верхних дыхательных путях, назначаются антибактериальные препараты (тетрациклин, тилозин и др.)

Профилактика герпес вируса у кошек

В качестве профилактики ринотрахеита применяются поливалентные вакцины: Мультифек, Нобивак Трикэт, Корифелин, Леукорифелин, Квадрикат и другие.

Вирусный ринотрахеит кошек во всем мире признан причиной большинства заболеваний верхних дыхательных путей у домашних кошек. От 50 до 70% взрослых кошек (R.A. Crandell, 1973), а по результатам недавних исследований и до 97% (D.A. Dawson, J. Carman et al., 1998) имеют антитела к этому вирусу. Установлено, что инфекция может вызывать заболевание до 100% невакцинированных кошек. Синдром поражения верхних дыхательных путей был впервые выделен как самостоятельное заболевание у группы котят в возрасте 5-10 недель в 1957 году (Crandel, Maurer, 1958), а в 1959 году Комитет по Номенклатуре Вирусных Заболеваний Кошек, утвердил предложенное Crandell и Despeaux название нового инфекционного заболевания кошек: «Feline Viral Rhinotraheitis (FVR)».

Возбудитель инфекционного ринотрахеита кошек - герпесвирус кошек тип 1 (Feline Herpes Virus type -1, FHV-1) - ДНК содержащий вирус подсемейства герпесвирусы.

Общей характеристикой для данного семейства является быстрое размножение вируса в клеточных культурах с разрушением клеток, тенденция к установлению латентной инфекции в чувствительных нервных ганглиях после первоначальной инфекции. Другие вирусы животных, относящиеся к данному подсемейству, включают: герпесвирус лошадей тип 1, герпесвирус свиней тип 1 и герпесвирус КРС тип 1 и 2, герпесвирус собак тип 1 и др. Типичный герпесвирусный вирион состоит из сердцевины – двойной цепочки ДНК, находящейся внутри икосаэдрического капсида. Примыкающий к капсиду электоронноплотный материал называют интегументом. Конечная структура, окружающая вирион - вирусная оболочка, образуется из ядерной мембраны клетки-хозяина (рис. 1).

Рис. 1. Герпесвирус кошек.

Известное на сегодняшний день распространение вируса ограничивается странами, находящимися в северных и южных температурных зонах. Болезнь широко распространена в России, США, Канаде, Великобритании, Южной Африке, Австралии, Германии, Швеции, Австрии, Чехословакии, Венгрии, Индии, Италии, Франции, Шотландии, Румынии и др. Информация о сезонных вспышках FHV-1 инфекции отсутствует, хотя известно, что в кошачьих популяциях заболевание проявляется в виде энзоотических вспышек.

Вирус герпеса кошек - FHV-1 вызывает заболевание не только у домашних кошек (Felis catus). Первое сообщение о выделении FHV-1 от экзотических кошек было получено в 1977 году из зоопарка Святой Луизы, где FHV-1 послужил причиной смерти трех обычных и пяти пятнистых леопардов (Neofelis nebulosa) в единственной вспышке. В настоящее время опубликовано значительное количество работ о важной роли вируса герпеса кошек в возникновении заболеваний у диких кошек: дикой африканской (Felis silvestris) и песчаной (Felis margarita) кошек на Ближнем Востоке и в Южной Африке (S. Ostrowski, Van Vuuren M, M. Daniel, D.M. Lenain et al., 2003) и дикой европейской кошки (Felis silvestris silvestris) в Западной и Восточной Европе (M.J. Daniels, M.C. Golder, O. Jarrett et al., 1999).

Клинические формы и патогенез.

Несмотря на то, что смертность при FVR кошек достаточно низкая (за исключением котят, у которых она может достигать 30%), заболевание представляет чрезвычайно серьезную проблему, обусловленную вызываемыми FHV-1-поражениями.

Наиболее часто встречают респираторную форму инфекции в сочетании с окулярными поражениями. Наблюдаемый инкубационный период может составлять от 2-3 до 10 дней. Ранние признаки болезни характеризуются наличием серозных носовых и окулярных выделений, повышением температуры тела и кашлем. Скученное содержание заболевших животных может вызывать пароксизмальный кашель и чихание. По мере прогрессирования заболевания носовые выделения становятся слизистыми или слизисто-гнойными, температура тела повышается до 40-40,5оС. У животных можно наблюдать интенсивную саливацию, в некоторых случаях подчелюстные лимфоузлы могут значительно отекать. Больные животные обычно сохраняют способность самостоятельно принимать пищу и воду, если не возникает осложнений.

Описаны различные формы осложнений, как респираторных, так и нереспираторных; при более тяжелом респираторном синдроме, часто сопровождающемся вторичной бактериальной инфекцией, дыхание становится затрудненным из-за обструкции носовых путей. У пораженных животных наблюдают вялость, анорексию и дегидратацию. В случае развития интерстициальной пневмонии возникает одышка с характерными респираторными звуками (Love, 1971), в этом случае прогноз неблагоприятный.

Язвенный глоссит может сопровождать респираторную форму инфекции (Johnson, Thomas, 1966; Karpas, Routledge, 1968). Язвы ротовой полости и кожные язвы в области груди, боков, живота, конечностей и спины могут встречаться у кошек без каких-либо признаков респираторной инфекции (Johnson, Sabine, 1971) (A. Suchy, B. Bauder, W. Gelbmann et al., 2000). Однако, случаев возвратного рецидивирующего глоссита или стоматита, связанного с латентной инфекцией, такой как herpes simplex у человека, у кошек не описаны.

Отсутствие возвратных повреждений позволяет утверждать, что оральные повреждения являются результатом диссеминации вируса или просто инвазии вирусом поврежденных тканей. Случаи язвенных поражений ротовой полости или кожи у животных без признаков респираторного заболевания могут означать контактную инфекцию, передаваемую механически (R.A. Crandell, 1973).

Респираторный синдром при данном заболевании может сопровождаться генерализованной инфекцией (Karpas, Routledge, 1968; Spradbrow et al., 1971, Bistner et al., 1971). Аборты (Johnson, Thomas, 1966; Spradbrow et al., 1971) и поражения ЦНС, включая эпилептические припадки, могут сопровождать респираторную форму заболевания. Явления катарального энтерита с геморрагическим илеитом, метрита и вагинита связывают с возникновением аборта. Но поскольку вирус в этих случаях из плацент или плодов не выделяли, и не было обнаружено фетальных или плацентарных изменений, которые могли быть связаны с прямым действием вируса, авторы считают, что аборты могли быть связаны с некоторым неспецифическим механизмом, связанным с тяжелым истощающим респираторным заболеванием у беременной самки.

Отмечена тропность вируса к местам роста костей скелета, включая носовые раковины, что подтверждено в результате проведенных экспериментов после внутривенной инокуляции молодым котятам. Даже при естественной инфекции отмечали случаи остеолитического поражения носовых раковин с некрозом и резорбцией лежащей ниже кости. Таким образом, последствием переболевания FHV-1 инфекцией могут стать хронические риниты и синуситы.

Глазные проявления острой формы FHV-1 инфекции почти всегда билатеральны, и, в общем, ограничиваются поражениями конъюнктивы. Блефароспазм - первоначальный клинический признак, начинающий проявляться через несколько дней после заражения. Достигая пика к пятому дню, он начинает сопровождаться серозными выделениями. Последние сменяются слизистыми и слизисто-гнойными к 7 дню, начиная ослабевать к 10 дню. Внешний вид конъюнктивы при острой инфекции характеризуется сильнейшей гиперемией, конъюнктива набухает (отек средней силы), но хемоз конъюнктивы не характерен для FHV-1-инфекции. Повреждения конъюнктивы возникают вследствие прямого цитолитического действия герпесвируса. Отмечают значительный тропизм вируса именно к конъюнктивальному эпителию, корнеальные повреждения значительно менее заметны. Корнеальные дендритные (древо-, ветвевидные) фигуры видны как двусторонние узоры. Множество микродендритных фигур видны на роговице между третьим и шестым днями инфекции, возникая из-за размножения попадающего на роговицу вируса. Дендритные поражения исчезают к 6 дню и вновь появляются на 11 день, когда вследствие некроза конъюнктивы высвобождается новая волна вирусных частиц. Вторичные дендритные поражения значительно больше, иногда, срастаясь, они формируют амебовидные узоры, но их количество значительно меньше первоначальных.

Гистологические исследования демонстрируют, что корнеальная инфекция, в отличие от конъюнктивальной, характеризуется размножением вируса с меньшим цитопатическим эффектом и без воспалительной клеточной реакции. Корнеальная инфекция сопровождается слабой и временной поверхностной васкуляризацией, и ее исчезновение признаков совпадает с исчезновением признаков поражения респираторного тракта.

Значительно более серьезные глазные патологии встречаются у тех кошек, которые ранее переболели герпесвирусной инфекцией. Хотя возможна и реинфекция, вызванная другим штаммом FHV-1, более вероятно, что глазная инфекция у взрослых кошек возникает в результате реактивации латентного вируса. В отличие от классического течения признаки поражения верхних дыхательных путей отсутствуют, а глазные поражения часто унилатеральны. Признаки возвратной инфекции могут ограничиваться конъюнктивальными поражениями или вызывать кератиты различной тяжести. Во многих случаях, небольшая гиперемия конъюнктивы и периодические глазные выделения – единственные клинические признаки. Сильный отек конъюнктивы не характерен. У многих кошек можно наблюдать сухие коричневатые выделения, скапливающиеся в медиальном углу глаза, хотя неизвестно, является ли данный признак специфичным для герпесвирусной инфекции. Инфекция может длиться недели, месяцы, рецидивы часты.

Корнеальные поражения, связанные с возвратной FHV-1 инфекцией проявляются несколькими различными синдромами.

Простейшая форма.

Древовидные (дендритные) эпителиальные изъязвления в сочетании с конъюнктивитом. Дендриты могут персистировать длительный период времени и могут сопровождаться изменениями в подлежащей строме (отеком и поверхностной васкуляризацией роговицы). Дендритные повреждения, которые, увеличиваясь, становятся похожими на географическую карту, именуются «географическими». Очень часто, однако, FHV-1-корнеальная инфекция не проявляется характерными клиническими проявлениями, позволяющими отличить ее от других причин язвенного процесса в роговице. Дендритный кератит в случае вторичной (возвратной) FHV-1-инфекции возникает так же, как и при первичном заражении – за счет размножения вируса и разрушения эпителиальных клеток.

Стромальный кератит (СК).

Как проявление корнеальной FHV-1-инфекции встречается реже. Из-за своей потенциальной способности вызывать нарушающее зрение корнеальное рубцевание, СК считают наиболее тяжелым проявлением корнеальной герпесвирусной инфекции.

FHV-1-СК обычно сопровождается хроническими эпителиальными изъязвлениями и легко распознается по наличию стромального отека и глубокой васкуляризации; микроскопически обнаруживают воспалительно-клеточный инфильтрат. Механизм, обуславливающий возникновение СК, неизвестен. Поскольку FHV-1 в норме не размножается в кератоцитах, маловероятно, что стромальные повреждения связаны с прямым действием вируса. Установлено, что СК не развивается даже после экспериментального заражения кошек, сопровождающегося механической скарификацией корнеального эпителия и стромы. Несмотря на диффузный некроз инфицированных конъюнктивальных тканей, корнеальный эпителий остается интактным и скарифицированная строма быстро заживает. Однако если кошки одновременно получают кортикостероиды, развивается СК, в конечном счете, приводящий к фиброзу пораженных тканей. В этом случае развитию кератита у кошек предшествует хронический эпителиальный язвенный процесс и замедленное заживление дефектов стромы. Оба явления предположительно связаны с действием кортикостероидов, замедляющих эпителизацию и угнетающих синтез коллагена. В сочетании с продолжительным выделением вируса под влиянием этих же обстоятельств корнеальные стромальные ткани, таким образом, должны подвергаться максимальному воздействию вируса. Множество экспериментальных исследований показало, что СК, вызванный herpes simplex virus, есть иммунопатологический процесс, инициированный вирусным антигеном, что обеспечивает возможность воздействия на корнеальную строму. Предполагают, что роль медиаторов в данном процессе может играть цитотоксическое действие Т-лимфоцитов. Каким бы ни был механизм, хронические или возвратные эпизоды СК ведут к прогрессирующему повреждению коллагена, нарушению фибриллярной структуры и, в конечном счете – стромальному помутнению.

При глубоких стромальных язвах и десцеметоцеле в некоторых случаях можно выделить FHV-1 из слезной жидкости. Неизвестно, является ли вирус основным инструментом воздействия на роговицу в таких случаях. Кажется маловероятным, что вирус способен индуцировать расплавление стромы. Скорее всего, расплавление стромы медиируется вторичной бактериальной инфекцией или первичный бактериальный язвенный процесс просто вызывает реактивацию и выделение латентного вируса.

Некоторые серьезные глазные патологии у кошек (необязательно специфичные) можно наблюдать вместе с инфекционным ринотрахеитом, например, корнеальная секвестрация – синдром, при котором дегенерирует коллаген корнеальной стромы и накапливается темно-коричневый или черный пигмент, источником которого предположительно является слезная пленка. Хотя заболевают любые породы кошек, наиболее к ним предрасположены персидские и гималайские кошки. Гистологически секвестр состоит из лишенных кератоцитов изъязвленных стромальных тканей, окруженных различным числом лимфоцитов, плазматических клеток, макрофагов и, в меньшей степени, нейтрофилов. Характер воспалительного процесса рассматривают как неспецифическую иммунную реакцию, вызывающую дегенерацию коллагена. Гистологические характеристики корнеальных секвестров несовместимы с иммунным механизмом, предположительно ответственным за повреждения коллагена, видимые при СК. Возможно, что секвестральные повреждения возникают как результат инфекции кератоцитов или сверхвыработки провоспалительных цитокинов.

В 1998 году группой исследователей M.P. Nasisse, T.L. Glover, P. Cecil, et al. проверено 156 образцов роговицы кошек с корнеальным секвестром на предмет выявления ДНК FHV-1 - 55,1% (86/156 образцов) дали положительный результат. Количество выявленных ДНК FHV-1 у кошек с корнеальными секвестрами персидской и гималайской пород различалось незначительно, 42,7 и 58,3% соответственно. Однако, суммарный процент положительных результатов у этих двух пород (46,5%), был значительно ниже, чем у остальных длинношерстных и короткошерстных пород с корнеальными секвестрами (80%).

По мнению исследователей FHV-1 является только одной из многих потенциальных угроз для роговицы, которые могут ускорять и провоцировать формирование секвестра. То, что FHV-1 обнаруживают в секвестрах домашних кошек чаще, чем у персидских и гималайских, только подтверждает данную теорию. Можно предполагать, что разница в преобладании ДНК FHV-1 в секвестрах домашних кошек по сравнению с персидскими кошками (43%), связана исключительно с невирусными факторами, например с более частым повреждением роговицы вследствие присущего данной породе экзофтальма и лагофтальма. Это предположение согласуется и с результатами наших собственных наблюдений, которые показывают, что наиболее часто у персидских кошек секвестр возникает именно при повреждении центральной части роговицы, которая из-за лагофтальма и экзофтальма недостаточно защищается веками, подвергаясь, таким образом, максимальному повреждающему действию агрессивных факторов внешней среды, наиболее скудно омывается слезой, что, безусловно, замедляет регенерацию тканей и создает максимально благоприятные условия для отложения пигмента и формирования секвестра. При повреждениях периферических участков роговицы, хорошо омывающихся слезой и защищаемых веками, происходит нормальная регенерация эпителия роговицы, что в сочетании с интенсивной миграцией сосудов из области лимба создает условия для быстрого заживления дефекта. Именно созданием благоприятных факторов для регенерации роговицы, на наш взгляд, объясняется практически 100% успех послойной кератэктомии в сочетании с тарзоррафией. Хотя при данной методике часто удаляются участки роговицы до? глубины и до 70% по площади, наблюдается быстрая регенерация тканей в течение двух-трех недель. Безусловно, значительная разница в числе положительных результатов у здоровых кошек (из 17 клинически здоровых кошек только одна (5,9%) была положительна на ДНК FHV-1) по сравнению с больными (55,1%), показывает, что существует определенная связь между вирусом FHV-1 и корнеальным секвестром (M.P. Nasisse, T.L. Glover, P. Cecil, et al., 1998). Однако эти данные не во всех случаях доказывают причинную роль именно FHV-1. У значительной части кошек, являющихся носителями FHV-1, вирус в латентном состоянии находится в тройничном ганглии и возможно в других тканях, таких как роговица, обонятельные луковицы и носовые раковины. Современные исследования (W.M. Townsend, J. Stiles and S.G. Krohne, 2001) показали, что при исследовании образцов роговицы и тройничных ганглиев от 46 кошек, не имевших в анамнезе респираторных или глазных заболеваний, ДНК герпесвируса кошек была выделена из 48,9% (45/92) препаратов роговиц и 41,3% (38/92) - тройничных ганглиев. Поскольку стимуляция чувствительных нервных окончаний способна реактивировать латентную инфекцию, возможно, что часть ДНК, определявшаяся в образцах с корнеальным секвестром, относится к латентному вирусу, который был реактивирован корнеальным воспалением и центробежно распространился в пораженных тканях.

Симблефарон.

Это прирастание участка конъюнктивы к самой конъюнктиве или роговице. Теоретически любое заболевание, значительно повреждающее конъюнктиву, может предрасполагать к формированию симблефарона. Но, принимая во внимание быстрый и обширный некроз конъюнктивального эпителия, который можно наблюдать при FHV-1 инфекции, вирус можно рассматривать как идеальный фактор, инициирующий формирование симблефарона. По наблюдениям M.P. Nasisse подавляющее большинство случаев симблефарона у кошек ассоциировалось с переболеванием в прошлом инфекцией конъюнктивы и верхних дыхательных путей (возможно FHV-1).

Энтропион.

Относительно редкая патология у кошек. Может быть самостоятельной проблемой, связанной с породной предрасположенностью, но во многих случаях проявляется вторично из-за хронического болевого раздражения, вследствие вирусного кератита. Трудно установить, что является его причиной, а что лишь следствием, но так называемый «спастический энтропион» у кошек является потенциальным осложнением блефароспазма, связанного с хронической FHV-1-инфекцией.

Есть подозрение, что FHV-1 может являться причиной сухого кератоконъюнктивита у кошек. Данная гипотеза построена на результатах недавнего экспериментального изучения, в котором уменьшение слезопродукции наблюдалось у 5 из 10 кошек с хронической FHV-1-инфекцией. Хотя механизм развития рассматривают лишь теоретически, тем не менее возможно развитие денита слезной железы или заращения выводных протоков. В других случаях, уменьшение слезопродукции при FHV-1 инфекции носит лишь временный характер (M.P. Nasisse, 1990).

Заболевание длится в среднем 14-28 дней. При нормальном уровне иммунитета и отсутствии осложнений, связанных с действием вторичной бактериальной микрофлоры, клинические признаки ослабевают к 10-14 дню заболевания, полностью исчезая к четвертой неделе с момента заболевания. У взрослых кошек летальный исход отмечают относительно редко, за исключением сильно истощенных, обезвоженных животных, или животных со сниженным иммунитетом. Тяжело протекает инфекция у кошек с сопутствующими вирусными заболеваниями: калицивирусной или короновирусной инфекцией (инфекционным перитонитом), лейкозом или иммунодефицитом.

Смерть наиболее часто наступает в результате обезвоживания, а также из-за вторичной бактериальной инфекции, которая может привести к бронхопневмонии с последующим развитием отека легких.

Пути передачи инфекции

Естественный путь заражения вирусом FHV-1 - контактный (назальные, оральные или конъюнктивальные выделения), хотя в экспериментальных исследованиях были обнаружены и другие пути распространения. Например, у беременных самок внутривлагалищная инстилляция вируса приводит к вагиниту и врожденной инфекции котят, а внутривенное заражение - к трансплацентарной инфекции и выкидышам. Тяжесть инфекции детерминируется как инфекционностью инокулируемого вируса, так и иммунным статусом животного, и практически не зависит от наличия вторичной бактериальной микрофлоры (Hoover et al., 1970).

Может также произойти косвенная передача вируса через зараженные секреторные выделения в клетках, посуду и инвентарь, персонал и так далее (особенно внутри закрытых пространств в кошачьих питомниках). Но поскольку вирусы имеют относительно короткий срок существования вне организма кошки, внешняя обстановка, как правило, не является долговременным источником распространения вируса. Аэрозольный способ передачи вируса, как полагают, не имеет большой значимости, так как существуют определенные свидетельства того, что кошка не выделяет инфекционный аэрозоль респираторных вирусов во время обычной деятельности системы дыхания. Однако чихание может привести к выбросу больших капель на расстояние свыше 1-2 метров.

Эффективность передачи зависит также от количества вируса, выделяемого инфицирующим животным, а также от длительности и близости контакта. Несмотря на то, что количество вируса при выделении больным животным и носителем может быть одинаковым, вирусы легче передаются от больных в острой фазе заболевания, а не от вирусоносителей, так как выделения у первых, как правило, более обильные. Однако, носители несомненно имеют большую значимость там, где имеют место тесные контакты, например в питомниках (R.M. Gaskel, R.C. Povey, 1977).

Вирус появляется в носовых и ротоглоточных секреторных выделениях уже через 24 часа после заражения и, как правило, активно выделяется в течение 18-30 дней. В случае латентного носительства вирус способен реактивироваться под действием факторов, понижающих иммунитет (стресс, беременность, лактация, применение кортикостероидов, сопутствующее заболевание). Реактивация вируса происходит, в среднем, через 7-10 дней после, например действия стресса, период выделения вируса в таком случае продолжается от 3-4 до 14 дней.

Лабораторная диагностика инфекционного ринотрахеита кошек

Безусловно, в литературе описано значительное количество методов диагностики герпесвирусной инфекции кошек, но, в данной статье, хотелось бы остановиться на методах, имеющих на наш взгляд наибольшее практическое значение.

1. Выделение вируса на культуре клеток.

В 1958 году Crandell and Maurer продемонстрировали, что вирус FHV-1 растет и вызывает цитопатический эффект в культуре клеток почки кошки, что позволило создать in vitro систему для выделения и изучения свойств FHV-1.

Для выделения вируса FHV-1 мазок берут с поверхности конъюнктивы или слизистой оболочки ротоглотки, обычно используют стерильные тампоны из хлопка или дакрона. Сразу после взятия пробы тампон помещают в пробирку с 1-1,5 мл вирусной транспортной среды с антибиотиками. При необходимости пробы замораживают и сохраняют при –70оС. Для выделения вируса обычно используют культуру клеток почки кошки CrFK, выращенную на плашках (рис. 2).

Рис. 2. Перевиваемая культура клеток почки кошки – CrFK.

Зараженную культуру клеток инкубируют при 37оС и 5% СО2 в течение 10 дней, просматривая каждые 24-48 часов для обнаружения признаков цитопатического действия вируса ИРТ кошек (рис. 3.)

Рис. 3. Цитопатическое действие вируса FHV-1, штамм «Гранд» на культуру клеток CrFK:

а). ЦПД вируса через 48ч после инокуляции,

б). ЦПД вируса через 72 ч после инокуляции.

Для подтверждения и идентификации выделенного изолята вируса FHV-1 используют метод иммунофлюоресценции со специфической антисывороткой (Nasisse и др., 1993), а также электронную микроскопию.

Основными недостатками метода выделения вируса на культурах клеток являются: длительность (до 10 дней), высокая трудоемкость, сложность, высокая стоимость, невозможность выделения вируса в случае бактериальной контаминации образцов.

Вероятно, что незрелый, необладающий достаточной инфекционностью вирус, продуцируемый на некоторых стадиях FHV-1-инфекции, ограничивает чувствительность традиционного метода выделения вируса (Reubel and others, 1993). В дополнение к этому разрушение оболочек вирионов при транспортировке, связывание вируса антителами (образование комплекса вирус-антитело) на поверхности слизистых оболочек и деградация ферментами слюны и слезы кошек также в некоторых случаях являются возможным объяснением низкой чувствительности метода выделения вируса на культурах клеток.

2. Полимеразная цепная реакция.

Важным этапом в совершенствовании методов диагностики инфекционных заболеваний явилась разработка методов, позволяющих обнаруживать гены или последовательности нуклеиновой кислоты, специфичные для определенного вида возбудителя инфекционного заболевания. Создание принципиально нового способа исследования, получившего название полимеразной цепной реакции (ПЦР), открыло новые возможности для эпидемиологического анализа инфекционных заболеваний.

Принцип ПЦР был описан в 1986 г. К. Мюллисом. В основе этого метода лежит многократное копирование с помощью фермента ДНК-полимеразы определенного фрагмента ДНК, являющегося маркерным для данного вида. Механизм копирования таков, что комплементарное достраивание нитей может начаться не в любой точке последовательности ДНК, а только в определенных стартовых блоках. Для создания стартовых блоков в заданных участках ДНК используют затравки - олигонуклеотиды длиной 20-30 нуклеотидных пар (праймеры). Они комплементарны последовательностям ДНК на левой и правой границах специфического фрагмента и ориентированы таким образом, что синтез ДНК, осуществляемый ДНК-полимеразой, протекает только между ними. В результате происходит экспоненциальное увеличение количества копий специфического фрагмента по формуле 2n, где n - число циклов амплификации. Построение новых нитей ДНК из дезоксирибонуклеотидтрифосфатов осуществляет фермент термостабильная ДНК-полимераза. Процесс амплификации заключается в повторении циклов амплификации (состоящих из денатурации ДНК, отжига праймеров и построения фрагмента). В результате 30-35 циклов амплификации синтезируется 108 копий фрагментов, что делает возможным визуальный учет результатов после электрофореза в агарозном или акриламидном гелях. Использование термостабильной ДНК-полимеразы позволило автоматизировать процесс амплификации с помощью специального прибора, называемого термоциклером. Этот прибор автоматически осуществляет смену температур согласно заданной программе и числу циклов амплификации.

Метод ПЦР обладает высокой чувствительностью, дающей возможность обнаруживать единичные бактериальные клетки или вирусные частицы. Но это преимущество ПЦР уместно рассматривать при сравнении с другими молекулярно-генетическими или иммунологическими методами диагностики. Однако высочайшая чувствительность ПЦР обычно достигается при работе с чистой культурой микроба или, что еще лучше, с очищенной нуклеиновой кислотой. Эта чувствительность автоматически не трансформируется в чувствительность метода при работе с клиническим материалом. На успех определения при работе с этим материалом влияют такие факторы, как методика приготовления образца, возможное присутствие ингибитора фермента, осуществляющего амплификацию, объем образца при низких концентрациях тестируемых молекул.

Метод ПЦР превосходит метод выделения вируса на культурах клеток, особенно в случае бактериальной контаминации, которая мешает традиционной технике культивирования; более чувствителен и менее трудоемок.

Наличие вторичной бактериальной и грибковой инфекции может осложнять и маскировать первичную вирусную инфекцию, затрудняя клиническую диагностику. Таким образом, существенным является возможность определения вирусных протеинов или вирусной ДНК для подтверждения диагноза первичной вирусной инфекции. ПЦР может являться одним из методов подтверждения FHV-1 инфекции в гистологических образцах в подозрительных случаях.

К сожалению, диагностика FHV-1 инфекции с помощью ПЦР-амплификации имеет ограниченную клиническую ценность, поскольку могут выявляться латентные инфекции, широко распространенные у кошек, таким образом, невозможно будет определить, играет ли FHV-1 первичную роль в возникновении заболевания, или же он просто реактивировался из латентного состояния под действием стресса или сопутствующей инфекции. Немалую роль в ограничении использования ПЦР является дороговизна оборудования и реактивов, высокая требовательность к качеству реактивов, строжайшие требования к помещениям и организации работы в ПЦР-лаборатории для исключения контаминации образцов продуктами амплификации.

3. Реакция иммунофлуоресценции.

РИФ, предложенную Кунсом еще в 1942 году, трудно отнести к новым методам исследования. Но благодаря появлению гибридомных технологий, позволяющих получать моноклональные антитела, РИФ получила в настоящее время вторую жизнь, ее чувствительность и специфичность значительно увеличены.

Популярность РИФ объясняется экономичностью, наличием широкого спектра диагностических наборов, быстротой получения ответа. Чаще всего она используется для быстрого обнаружения возбудителя в патологическом материале. В этом случае из исследуемого материала как для обычной микроскопии готовят мазок на предметном стекле. Препарат фиксируют метиловым спиртом, ацетоном или другим химическим фиксатором, иногда входящим в состав диагностического набора. На поверхность фиксированного мазка наносят меченые ФИТЦ сыворотки или моноклональные антитела (в случае непрямой РИФ сначала препарат обрабатывают сывороткой против искомого антигена, а затем мечеными антителами к иммуноглобулинам, использованным на первом этапе (антивидовыми)). Поскольку РИФ является разновидностью гетерогенного анализа, один этап отделяется от другого промывкой.

Учет результатов реакции осуществляется с помощью люминесцентного микроскопа, в оптическую систему которого устанавливается набор светофильтров, обеспечивающих освещение препарата ультрафиолетовым или сине-фиолетовым светом с заданной длиной волны. Это заставляет флюорохром светиться в заданном диапазоне спектра. Исследователь оценивает характер свечения, форму, размер объектов и их взаимное расположение.

Если прямая РИФ может использоваться только для обнаружения антигена, то непрямой вариант этой реакции может быть использован помимо обнаружения антигена и для обнаружения антител. В этом случае готовят мазки из эталонного штамма возбудителя. Исследуемую сыворотку наносят на мазок. Если в ней присутствуют искомые антитела, то они связываются с антигенами микробных клеток. Промывка препарата буферным раствором позволяет удалить несвязанные антитела. Затем препарат обрабатывают меченой сывороткой против иммуноглобулинов (антивидовой). В случае положительного результата реакции при микроскопии мазка в люминесцентном микроскопе наблюдают специфическое свечение эталонной культуры.

В ветеринарной вирусологии РИФ активно используется для диагностики следующих вирусных заболеваний:

Вирус бешенства (непрямая),

Вирус иммунодефицита КРС (непрямая),

Коронавирус собак (непрямая),

Чума собак (непрямая),

Инфекционный перитонит (коронавирус) кошек (прямая),

Респираторный и репродуктивный синдром свиней (прямая).

РИФ является чрезвычайно ценным методом при диагностике FHV-1, при этом используют оба варианта РИФ. Для обнаружения вируса обычно берут эпителиальные клетки конъюнктивы (конъюнктивальную полость перед взятием пробы очищают от слизи и гнойных выделений), скарифицируют их под местной анестезией. При необходимости скарифицируют и эпителиальные клетки роговицы. Скарифицированные клетки помещают на предметное стекло, высушивают при комнатной температуре и фиксируют в ацетоне в течение 10 минут (рис. 4).

Рис. 4. РИФ при диагностике FHV-1:

а). Клетки, инфицированные вирусом FHV-1;

б). Скопление клеточных мембран инфицированных клеток.

Метод иммунофлуоресценции можно по праву отнести к экспресс-методам диагностики, поскольку он позволяет получить результат в течение 1-1,5 часов с момента взятия образца, прост в исполнении, не требует стерильной работы.

4. Гистохимический вариант ИФА или иммунопериксидазная реакция.

Иммунопероксидазная реакция аналогична методу иммунофлуоресценции, но отличается тем, что для постановки реакции используют антитела, меченные не флуорохромом, а ферментом, и учет реакции проводят не под люминесцентным, а под обычным световым микроскопом. Обычно, в этом варианте ИФА используют антитела, меченые пероксидазой. Материалом для выявления вирус-специфических антигенов или вирусов с помощью иммунопероксидазной реакции могут служить: мазки-отпечатки различных органов, парафиновые срезы, культура клеток, мазки крови. Аналогично РИФ иммунопероксидазную реакцию ставят в прямом и непрямом вариантах.

Прямой пероскидазный тест.

При выявлении антигена с его помощью используют противовирусные конъюгаты - конъюгаты, полученные из антител, выделенные из специфической сыворотки, и фермент. Например, культуру клеток, выращенную на покровных стеклах и инфицированную вирусом, или мазки-отпечатки фиксируют в течение 10 минут (например, охлажденным ацетоном), высушивают на воздухе и наносят иммунопероксидазный конъюгат в рабочем разведении. Инкубируют 1-2 часа при 37оС во влажной камере, ополаскивают дистиллированной водой и высушивают на воздухе. Наносят несколько капель раствора субстрата – диаминобензидинтетрахлорида, инкубируют 5-10 минут и промывают 10-15 минут в физиологическом растворе и ополаскивают дистиллированной водой.

В положительных случаях, то есть при наличии антигена в исследуемом препарате после нанесения иммунопероксидазного конъюгата образуется комплекс антиген-антитело, помеченный ферментом. После нанесения на препарат раствора субстрата, последний под действием фермента разлагается, образуя цветной продукт ферментативной реакции, хорошо видный в световом микроскопе.

Результаты учитывают с помощью светового микроскопа. Диаминобензидинтетрахлорид под действием пероксидазы разлагается, образуя продукт реакции голубого цвета, который быстро приобретает коричневый окрас. В препарате видны или диффузное желто-коричневое окрашивание, или гранулы коричнево-черного цвета. Вирус-специфический антиген в мазках и гистосрезах обнаруживают тем же способом.

Непрямой пероскидазный тест.

Используют антивидовые иммунопероксидазные конъюгаты. Преимуществом непрямого метода является универсальность меченых антивидовых глобулинов, а также большая чувствительность его по сравнению с прямым тестом. Методика его постановки отличается двумя этапами: на исследуемый образец наносят специфическую для исследуемого антигена сыворотку, после инкубации и промывания наносят антивидовой пероксидазный конъюгат в рабочем разведении и инкубируют при 37оС 1 час. Далее следуют этапы, описанные в разделе о прямом методе. При наличии в исследуемом материале вирус-специфического антигена после внесения специфической сыворотки образуется комплекс антиген-антитело, для выявления которого используют антивидовые или вторичные антитела, меченые ферментом; образуется более сложный, чем в первом случае, комплекс «антиген-антитело-вторичное антитело-фермент». Полученный комплекс выявляют добавлением субстрата, который под действием фермента разлагается, образуя цветной продукт ферментативной реакции. Учет результатов, как и в первом случае, проводят под световым микроскопом.

Иммунопероксидазная реакция в прямом и непрямом вариантах используется для выявления вирусов бешенства, ящура, герпесвирусов, энтеровирусов и др. На сегодняшний день, вероятно, это наиболее ценный метод для экспресс-диагностики FHV-1. Он позволяет получить четкий и быстрый диагноз, дает возможность обнаруживать как FHV-1-антиген, так и антитела к нему в мазках, мазках-отпечатках, смывах, образцах тканей и т.д. Постановка иммунопероксидазных тестов требует минимального количества реактивов и оборудования, не требует стерильности, проста в исполнении, может проводиться в любой лаборатории при наличии обычного светового микроскопа.

5. Иммуноферментный анализ.

ИФА – специфичный и универсальный метод, отличающийся высокой чувствительностью, удобный для автоматизации и стандартизации реагентов. В ИФА первый известный компонент (антитело или антиген) сорбируют на твердую фазу. Следующие компоненты, включая исследуемые пробы, вносят последовательно в жидком растворенном виде. Сформировавшиеся после инкубации иммунные комплексы антиген-антитело отделяют от непрореагировавших компонентов реакции при отмывании планшет. В ИФА используют противовирусные или антивидовые антитела, меченые пероксидазой хрена (ПХ) или другими ферментами, которые затем выявляются различными субстратами (диаминобензидин, 5-аминосалициловая кислота, о-фенилендиамин). Изменение цвета регистрируется визуально или спектрофотометрически, что дает возможность проводить количественный учет результатов анализа.

Разработаны различные варианты ИФА: прямые, непрямые, методы блокирования и конкурентные. В прямых вариантах используют меченые ферментом противовирусные антитела, в непрямых – антивидовые конъюгаты. В конкурентном варианте и методе блокирования типирование и титрование исследуемых антигенов и антител обеспечивается за счет вытеснения с их помощью определенного количества меченого антигена или антитела.

Для обнаружения антител к FHV-1 ИФА ставят на многолуночных микротитровальных плашках, сенсибилизированных антигеном FHV-1 по стандартной методике. Используют как моноклональные антитела, так и поликлональные анти-кошачьи IgG, в качестве ферментной метки чаще всего используют пероксидазу хрена. Определения показателя абсорбции проводят на автоматическом ИФА-ридере с фильтром 492 нм.

ИФА – универсальный, и на сегодняшний день наиболее чувствительный и совершенный метод определения антител к FHV-1 у кошек. Он позволяет определять уровень антител как в сыворотке крови, так и во внутриглазной и спинномозговой жидкостях, что необходимо при проведении любых научных и научно-практических исследований. С помощью ИФА можно проводить контроль эффективности вакцин против FHV-1 и иммунных сывороток, определять напряженность иммунитета, что позволяет оценить степень защиты животных от заражения и заболевания и т.д.

Заключение

Герпесвирусная инфекция по своей значимости занимает одно из ведущих мест среди инфекционных заболеваний кошек. Быстрый и точный диагноз является одним из важнейших факторов лечения и профилактики инфекционного ринотрахеита кошек. Применение методов иммунофлуоресценции, иммуногистохимии и иммуноферментного анализа для диагностики FHV-1 открывает новые перспективы в изучении и контроле этого серьезного заболевания.

Список литературы:

1. Detection of feline herpesvirus-1 DNA in corneas of cats with eosinophilic keratitis or corneal sequestration. Mark P. Nasisse, Tony L. Glover, Cecil P. Moore, Benjamin J. Weigler (American Journal Veterinary Research Vol. 59, No. 7, July 1998).

2. Detection of feline herpesvirus-specific antibodies and DNA in aqueous humor from cats with or without uveitis. David J. Maggs, Michael R. Lappin, Mark P. Nasisse (American Journal Veterinary Research, Vol. 60, No 8, August 1999).

3. Differential sensitivity of culture and polymerase chain reaction for detection of feline herpesvirus 1in vaccinated and unvaccinated cats. J.E. Sykes, G.F. Browning, G. Anderson, V.P. Studdert, H.V. Smith; (Archives of Virology 1997, 142; 65-74).

4. Feline Herpesvirus Ocular Disease. Mark P. Nasisse (Small Animal Ophthalmology, May, 1990).

5. Feline Viral Rhinotraheitis (FVR), Robert A. Crandell. Advances in veterinary science and comparative medicine. Vol. 17, Academic press New-York and London, 1973 (201-221).

6. High sensitivity polymerase chain reaction assay for active and latent feline herpesvirus-1 infection in domestic cats. B.J. Weigler, C.A. Babineau, B. Sherry, M.P. Nasisse. (The Veterinary Record, March 1997).

7. Immunologic, histologic and virologic features of herpesvirus-induced stromal keratitis in cats. Mark P. Nasisse; Robert V. English; Mary B.Tompkins; James S. Guy; Wendy Sussman (Am. J. Vet. Res, Vol. 56, No. 1, January 1995).

К.А. Перепечаев, Д.П. Кузнецов, В.И. Уласов, ВГНИИ контроля, стандартизации и сертификации ветеринарных препаратов – центр качества ветеринарных препаратов и кормов, г. Москва, Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт биологической промышленности, г. Щелково

Ринотрахеит или герпес у кошек крайне опасное и в то же время широко распространенное заболевание. Недуг имеет вирусную природу, быстро распространяется и к сожалению, «абсолютное» лечение пока недоступно для человечества. Учитывая темпы распространения и поражения – герпесом болеют люди, животные, птицы, рыбы и даже растения, оставлять вопрос без внимания неразумно, тем более, если в у вас под опекой проживает питомец, за которого вы в ответе.

Герпесвирус кошек поражает всех животных независимо от породы, возраста, пола и условий проживания. Вирус гипотетически может проживать без носителя до 60 суток, на деле, микроорганизмы гибнут через 60–100 часов. Болезнь считается сезонной (зимний период), поражает органы дыхательной системы, отсутствие лечения, часто приводит к гибели животного. Чаще, болеют котята, пожилые особи и питомцы с низким уровнем иммунной защиты. Особая опасность в том, что герпесвирусная инфекция у кошек передается всеми возможными путями:

• Воздушно-капельным – при чихании, кашле, непосредственном общении.

• Контактным – от предметов мебели, одежды, мисок, подстилок, туалетных лотков.

• Половым – контакт слизистых оболочек двух особей, обмен физиологическими жидкостями.

• Через жидкости (слезы, слюну, мочу).

• С испражнениями – здоровому животному достаточно понюхать фекалии носителя.

Обратите внимание! Кошачий ринотрахеит не передается человеку! Но молниеносно поражает других кошек живущих в доме или контактирующих с владельцем носителя.

По сути, вирус герпеса является «пусковым механизмом» ОРВИ кошек, а вот во что он перерастет, зависит от физиологической крепости животного. В ветеринарной практике принято считать, что ринотрахеит, это первопричина:

• (ринита) – отек слизистых оболочек носа, носоглотки и глаз, вызываемый вирусными микроорганизмами.

• – воспаление верхних дыхательных путей, поражающее трахеи. Игнорирование приводит к тому, что вирус опускается и вызывает ларингит и бронхит.

• – также заболевание верхних дыхательных путей, протекает тяжело, сопровождается отделением мокрот, кашлем, повышенной температурой. При игнорировании лечения переходит в хроническую форму или провоцирует пневмонию. По неведомым причинам существует миф, что бронхит не заразен, на деле, любая болезнь, вызванная вирусом может передаваться здоровым особям.

• – опасное заболевание, поражающее альвеолы легких, приводящее к нарушению газового обмена (кислородному голоданию). Игнорирование лечение приводит к смерти животного.

Обратите внимание! В ветеринарной практике часто «объединяют» вирусы герпеса и калицивироза. Болезни действительно очень схожие – первопричины расзивтия, скорость распространения, симптомы, течение и последствия – общие, но недуги вызываются разными «агентами».

Читайте также: Основные виды трематод у кошек: общие сведения и лечение

Причины возникновения и диагностика кошачьего герпеса

На планете выявлено более 200 разновидностей герпеса, протекающих по одинаковому принципу. Герпес – ДНК-содержащий вирус, то есть, он внедряется в организм животного настолько «мастерски», что иммунитет не замечает «врага». Недуг является латентным – остается в организме носителя всю жизнь и проявляет себя при падении иммунитета. Проще говоря, если у питомца один раз появился герпес, значит, он есть, останется на всю жизнь и может «разбушеваться» снова. Болезнь передается потомству в утробе матери, реже, в родовых путях, поэтому малоэффективно, а скорее бессмысленно, отлучать котят от молока если обнаружен герпес у кормящей кошки.

Важно! Котята, рожденные кошкой-носителем инфицированы в 100% случаев, однако, вероятность перерастания болезни в острую форму – не более 50%, при полноценном уходе, естественно.

Вирус герпеса активизируется по всевозможным причинам, пагубно влияющими на иммунитет, начиная с неправильного кормления и переохлаждения, заканчивая скрытой патологией. Инкубационный период активного поражения составляет 3–7 дней, по истечении которых начинают появляется первые симптомы :

• Отек слизистых оболочек дыхательных путей – у кошки часто упускается, животное снижает активность, но в целом ведет себя как обычно.

• Поражение эпителия – на губах, языке, небе возникают мелкие язвочки, которые периодически подсыхают и растрескиваются – смотрите фото. На глазах заметна отчетность, чрезмерное слезотечение, при прогрессировании – конъюнктивит.

• Активное выделение слизи – шерсть на носу покрывается коричневыми или желтыми корочками, которые хорошо заметны после сна.

Читайте также: Желтуха у кошек: признаки и уход за больным животным

Если вашему питомцу повезет, недуг будет ограничен вышеперечисленными симптомами. Но это не значит, что герпес можно игнорировать! Острое течение болезни более опасно и кошка может не дожить до «пика» поражения дыхательных путей – пневмонии.

Герпес у кота в острой стадии сопровождается:

• Лихорадкой – повышение базовой температуры тела выше 40°.

• Резкой потерей веса и отказом от еды.

• Сердечной недостаточностью и учащенным дыханием .

• Гнойным конъюнктивитом.

• Вымиранием микрофлоры кишечника – несварение, запор.

• Дыханием ртом.

• Сильными приступами кашля с отхаркиванием мокрот.

Обратите внимание! Без лечения, кошка болеет 14 дней и либо умирает, либо становиться пожизненным носителем – болезнь переходит в хроническую форму.

Лечение герпеса у кошек

Для начала забудьте о том, что герпес можно диагностировать «на глаз» или лечить народными средствами – нереально, бесполезно, опасно! Компрессы, мази и «болтушки» домашнего изготовления применяются только для симптоматического лечения, например, конъюнктивита. Прежде диагностировать герпес и определить чем лечить недуг на конкретной стадии сдается кровь. Причем это не биохимический анализ, а ПЦР (полимеразная цепная реакция) или ИФА (часто дает ложноотрицательный результат) пробы для уточнения диагноза могут назначаться смывы ротовой полости.

После подтверждения наличия агента-возбудителя ветеринар определяется как лечить кошку, но и тут все сложно. Животное может быть носителем не активизировавшегося вируса герпеса, но страдать от другого заболевания со схожими симптомами, например, микоплазмозом. К тому же лечения именно от герпеса не существует, да и любые «потуги» ветеринара будут бесполезны пока вирус не начнет «буйствовать» и разрушать организм.

Инфекционный ринотрахеит кошек ещё называют герпесвирусной инфекцией, по названию возбудителя. Это вирусная инфекция, которая сопровождается выделениями из глаз, носа, а также воспалением верхних дыхательных путей (отчего и название), которое в запущенных случаях может переходить и на бронхи, и на лёгкие.

Особенности герпесвирусов

Зачастую ринотрахеит протекает у кошек скрытно — обостряясь в периоды болезни или инфекций. Поэтому Вы можете и не знать о наличии болезни у питомца.

Герпесвирус также может поражать глаза , наиболее часто это наблюдается у маленьких котят. Иногда, при своевременном лечении, глаза можно спасти, однако часто их приходится удалять. Такие животные уже не смогут выжить в условиях улицы или свободного выгула.

Отличительные черты герпесвируса (ринотрахеита)

Герпесвирусы – это очень обширное семейство вирусов, которое включает в себя возбудителей разнообразнейших болезней человека, млекопитающих, птиц, амфибий, а также рыб. Отличительной чертой этого вируса является его скрытое (латентное) нахождение в организме очень длительное время. Так и у кошек он может долгое время не проявлять себя, внезапно активизируясь в результате иммуносупрессии ( , другие вирусные инфекции могут быть причиной подавления иммунитета) или после стресса – переезда, операции и т. п.

Все вирусы этой группы имеют общие биологические свойства. Избавить полностью от вируса организм не получится, он останется до конца жизни.

Выявить у кошки тот или иной вид герпесвируса может только ветеринар.

Классифицируют 8 типов герпесвирусов , которые вызывают различные по течению и тяжести заболевания у человека. Это значит, что все остальные виды герпесвируса не страшны человеку. В том числе это и герпесвирусы кошек типа 1 и 2. Герпесвирус 1 типа является возбудителем как раз инфекционного ринотрахеита, герпесвирус 2 типа вызывает урологический синдром.

Вышеизложенная информация говорит о том, что герпесвирус – видочувствителен, и также, как кошка не может заразиться герпесом от рыбы, также и не может человек заразиться от кошки . Есть сведения о том, что кошачий герпесвирус первого типа был выделен у собак, однако информация о возникновении заболевания собак герпесвирусом кошек 1 типа отсутствует. Существует герпесвирус собак, самым характерным признаком заболевания которым является .

Опасен ли для человека ринотрахеит у кошек

Поставить точный диагноз вашему коту помогут ПЦР диагностика. Если это ринотрахеит, то он не опасен для человека.

Несмотря на то, что герпесвирус кошек , животное необходимо отнести к ветеринару. Диагноз на герпесвирусную инфекцию установить только по клиническим симптомам невозможно. Что более важно, с подобной симптоматикой могут протекать заболевания, которые могут передаться и человеку. Среди таких болезней бордетеллиоз, который может провоцировать у человека пневмонию, и , который может стать .

Для постановки правильного диагноза необходимый тщательный осмотр животного, сбор анамнеза, а также дополнительные исследования на усмотрение врача.

ПЦР-диагностика

Они могут включать ПЦР-диагностику, а также анализ на хламидиоз (например, микроскопия конъюнктивного смыва). ПЦР – полимеразная цепная реакция – это анализ крови на выявление конкретно ДНК вирусного агента . К сожалению, такой анализ может быть как ложнопозитивным, так и ложнонегативным, и может не учитывать сопутствующие инфекции.

В случае если вдруг окажется, что у животного заболевание, опасное для хозяина, ветеринарный врач подробно расскажет, как уберечь себя от заражения и как при этом качественно помочь животному. Таких кошек можно оставлять на стационаре (в клиниках в которых есть возможность принимать вирусных животных на стационар).

Если у вашего кота обнаружен вирус, опасный и для человека в некоторых случаях, кота посоветуют поместить на некоторое время в стационар.

Герпесвирусная инфекция, если начать её лечение вовремя, может уйти «на задний план» при правильном лечении. После этого, при правильном содержании, кошка может прожить много лет без рецидивов.

Ринотрахеит у котят

У котят заболевание герпесвирусом протекает серьёзнее . Чаще всего он поражает глаза. Как уже было сказано, угрозы такое животное для человека не представляет, однако котёнок может очень скоро погибнуть, если не вмешаться и не спасти глаза. В запущенных случаях глаза приходится удалять, однако такие животные в условиях домашнего содержания

Особенно тяжело герпесвирус протекает у котят, поражая их глазные яблоки.

Видео о лечение ринотрахеита у кошек

Профилактика

К сожалению, нет никакой гарантии того, что у котёнка, которого приобрели у заводчика или приютили с улицы, нет герпесвируса. Животные, которые являются носителями герпесвируса, нормально переносят вакцинацию, которая в будущем, в случае проявления инфекции, поможет избежать серьёзных последствий заболевания. Также вакцинация оберегает от сочетанных инфекций .

Избежать «пробуждения» вируса не так-то легко, однако если оберегать кошку от стресса, регулярно проводить вакцинацию и придерживаться правил содержания кошек , животное может прожить жизнь так и не узнав, что такое герпесвирус, или .

К сожалению, ни одно живое существо, обитающее на нашей планете, не застраховано от острых инфекций. Одним из наиболее распространенных недугов, с которыми приходится сталкиваться владельцам домашних питомцев, является герпес у кошек. Симптомы и лечение этой болезни будут рассмотрены в статье.

Какие особи наиболее восприимчивы к вирусу?

Следует отметить, что эта инфекция поражает животных, независимо от их возраста. Но чаще всего герпес или ринотрахеит встречается у маленьких котят. Особенно быстро он распространяется в питомниках, в которых одновременно содержится большое количество животных.

Как правило, герпес у кошек проявляется на фоне стресса, недостаточного питания или переохлаждения. Он поражает невакцинированных особей, живущих в ненадлежащих условиях и не получающих должного ухода. Все вышеперечисленные факторы существенно повышают риск развития этого заболевания.

Как происходит заражение?

Возбудителем данного заболевания является ДНК-содержащий вирус, относящийся к семейству Herpesviridae. Диаметр его вирионов варьируется от 151 до 225 нм.

Вирус, попавший на слизистые оболочки дыхательных путей, быстро проникает в клетки эпителия. Там он активно репродуцируется, разрушая их. Это приводит к развитию воспалительного процесса. Вначале на поверхности слизистой появляются небольшие участки некроза. Со временем они становятся более обширными. Вирус герпеса у кошек адсорбируется на лейкоцитах. В дальнейшем он проникает в кровь и разносится по всему организму.

Возбудитель, попадающий сквозь гематоэнцефалический и плацентарный барьеры, поражает плод, матку, плаценту и мозг. Иногда течение болезни может осложняться наличием условно-патогенной микрофлоры.

Причины возникновения герпеса у кошек

В большинстве случаев данный вирус передается воздушно-капельным путем при контакте больных и здоровых животных. Он устойчив к воздействию кислой среды, но достаточно быстро разрушается под влиянием высоких температур. Вирус может находиться в лужах, траве или грунте, поэтому для инфицирования не всегда нужен непосредственный контакт с заболевшим животным.

Вирус герпеса содержится в семенной жидкости самцов, поэтому его передача может произойти во время вязки. Инфицированная беременная кошка может передать заболевание будущим котятам через плаценту. Также заражение может произойти через молоко, в процессе вскармливания малышей.

Герпес у кошек: симптомы

Следует отметить, что интенсивность и степень проявления данного заболевания напрямую зависит от возраста, иммунитета и общего состояния животного. К наиболее характерным проявлениям ринотрахеита можно отнести резкое повышение температуры до 41,5 градуса.

У инфицированной особи отмечаются обильные гнойные выделения из носовых ходов и глаз. В запущенных случаях в них присутствуют кровянистые вкрапления. Нередко заболевание сопровождается приступами кашля, чиханием, хрипами, затрудненным дыханием и отечностью гортани. На слизистых верхних дыхательных путей появляется белый налет. Герпес у кошки на губе можно распознать по наличию мелких прозрачных пузырьков.

Инфицированное животное становится вялым, сонливым и апатичным. У него снижается активность и В некоторых случаях у домашних питомцев наблюдается повышенное слюноотделение, приступы рвоты, увеличение шейных и челюстных лимфоузлов. Иногда у мохнатых пациентов развивается светобоязнь, залипание век и слезотечение.

Лечение

Терапия должна быть нацелена на уничтожение вируса и на восстановление защитных функций слизистых оболочек дыхательных путей. На ранних стадиях герпес у кошек прекрасно лечится с помощью специфических сывороток и глобулинов. Не менее эффективно помогают справиться с болезнью препараты интерферона.

Что касается антибиотиков, то они совершенно бесполезны против самого вируса, но отлично подавляют патогенную микрофлору, осложняющую течение основного недуга. Одновременно с ними назначают аскорбиновую кислоту и терапевтические дозы витамина E, A и B. Истощенным особям рекомендуют лечение солевыми растворами.

Симптоматическая терапия включает в себя прием успокоительных, сердечных, противорвотных и отхаркивающих препаратов. Глаза и нос животного периодически очищают от выделений с помощью тампонов, смоченных в дезинфицирующих веществах. Как правило, для этих целей используют борную кислоту, перманганат калия, фурацилин или настои лекарственных растений.

Инфицированного питомца помещают в теплую комнату, в которой отсутствуют сквозняки. В этот период пушистый пациент нуждается в особенном питании. Основу кошачьего рациона должны составлять протертые овощи, каши, подогретое молоко, бульоны, рыбный, говяжий и куриный фарш. Если домашний любимец напрочь отказывается от еды, можно попытаться стимулировать аппетит с помощью любых сильно пахнущих продуктов.

Важно изолировать заболевшую кошку от здоровых животных. Чтобы облегчить дыхание и уменьшить заложенность носа, мохнатому пациенту делают ингаляции или периодически выносят его в предварительно пропаренную ванную.

Кроме того, необходимо поддерживать чистоту кошачьего лотка и мисок для пищи и воды. Также следует регулярно промывать нос больной кошки, поскольку забитые ходы затрудняют процесс дыхания.

Чтобы уничтожить вирус, нужно протереть все загрязненные поверхности дезинфицирующим раствором. Для его приготовления используют хлорку и воду. Их смешивают в соотношении 1:32. Остальные предметы, которые нежелательно подвергать воздействию хлорки, можно обеззаразить с помощью мыльного раствора. Что касается диванов и кресел, то их можно обработать специальными средствами для мебели.

Методы профилактики

Герпес у кошки довольно распространенное заболевание, которое легче предотвратить, чем лечить. Поскольку этот недуг часто возникает на фоне стрессов, нужно постараться создать для своего питомца комфортную психологическую обстановку. Старайтесь избегать резких звуков, внезапных изменений и перемещения мебели. Все это нервирует животное, подвергая его стрессам.

Важно регулярно чистить кошачью подстилку и прочие предметы ухода за животным. Не следует пренебрегать вакцинацией и регулярными профилактическими визитами к ветеринару.

Немного о прививках

Следует отметить, что своевременно проведенная вакцинация надежно защитит домашнего питомца от этого достаточно серьезного заболевания. Как правило, для таких целей используют три разновидности препаратов.

Самой лучшей считается Она позволяет сформировать устойчивый иммунитет уже через четверо суток после введения. Не менее эффективны поливалентные и инактивированные препараты. Первую прививку делают после того, как котенку исполнится девять недель. Спустя двадцать один день проводят повторную вакцинацию. В дальнейшем процедуру повторяют раз в год.